使用Trinity拼接以及分析差异表达一个小例子
Trinity 将测序数据分为许多独立的de Brujin graph,理论上每一个图对应一个表达的基因。
整个流程分为三个步骤:Inchworm, Chrysalis, and Butterfly
Inchworm: 从reads中提取所有的重叠k-mers,根据丰度递减的顺序检查每个k-mers,然后将重叠的k-mers延长到不能再延长,称为一个contig
Chrysalis: 将上一部生成的contig聚类,对每个类构建de Brujin graph
Butterfly: 根据构建的de Brujin graph ,寻找具有可变剪接的全长转录本,同时将旁系基因的转录本分开
https://github.com/trinityrnaseq
Trinity的硬件需求:
Inchworm 和 Chrysails 步骤对内存的需求很大,官方给出的说法是大致为每一百万对PE reads需要1g内存
使用的转录组数据为 Schizosaccharomyces pombe ,共4个样本(left right 表示双端测序数据的两端)
- % wget \
- http://sourceforge.net/projects/trinityrnaseq/files/misc/Trinity
- NatureProtocolTutorial.tgz/download
- #解压后得到如下的文件
- tar –xvf TrinityNatureProtocolTutorial.tgz
在拼接时,可以将每个样本都拼接成一个转录组,但是更合理的方法是将所有样本的reads合在一起再进行拼接,所以先将这四个样本的reads合在一起。
- % cat *.left.fq > reads.ALL.left.fq
- % cat *.right.fq > reads.ALL.right.fq
- #添加环境变量
- % export PATH=/usr/local/tools:$PATH
- #一种典型的使用方法入下
- #其中参数SS_lib_type RF 表示数据是双端(RF or FR) 单端(F or R)
- % Trinity --seqType fq --max_memory 1G --left reads.ALL.left.fq --right reads.ALL.right.fq --SS_lib_type RF --CPU 2
完成后会在当前的工作目录生成一个 trinity_out_dir 的文件夹,Trinity.fasta为最终拼接结果。
Trinity自带了一个脚本可以显示一些结果的基本统计信息,N50表示的意思如下图。
- % $TRINITY_HOME/util/TrinityStats.pl trinity_out_dir/Trinity.fasta
使用GMAP将拼接结果比对到参考基因组(有参考基因组的情况下)
- #首先准备GMAP需要的参考基因组,参考基因组文件为genome.fa
- gmap_build -d genome -D ./
- #algin 拼接结果,保存为一个sam文件
- gmap -n 0 -D . -d genome ./trinity_out_dir/Trinity.fasta -f samse > trinity_gamp.sam
使用samtools转换为BAM文件(binary sam 优点是占用磁盘空间小,运算速度快,一些对数据的排序或者提取命令需要转换为BAM文件)
- samtools view -Sb trinity_gmap.sam > trinity_gmap.bam
- #排序,方便后续使用
- samtools sort trinity_gmap.bam trinity_gmap
- #建立索引,需要先排序,否则报错,产生.bai文件
- samtools index trinity_gmap.bam
使用tophat 将RNA-seq reads map到参考基因组
- #准备参考基因组
- bowtie2-build GENOME_data/genome.fa genome
- #run tophat 将所有的reads比对到参考基因组上
- tophat2 -I 300 -i 20 genome \
- RNASEQ_data/Sp_log.left.fq.gz,RNASEQ_data/Sp_hs.left.fq.gz,RNASEQ_data/Sp_ds.left.fq.gz,RNASEQ_data/Sp_plat.left.fq.gz \
- RNASEQ_data/Sp_log.right.fq.gz,RNASEQ_data/Sp_hs.right.fq.gz,RNASEQ_data/Sp_ds.right.fq.gz,RNASEQ_data/Sp_plat.right.fq.gz
- #下面的IGV基因组浏览器需要先建立索引
- samtools index tophat_out/accepted_hits.bam
使用基因组浏览器IGV (有GUI) 查看trinity的拼接结果
- igv.sh -g `pwd`/GENOME_data/genome.fa `pwd`/GENOME_data/genes.bed,`pwd`/tophat_out/accepted_hits.bam,`pwd`/trinity_gmap.bam
使用RSEM定量
除了拼接以外,Trinity还准备了一些脚本进行后续的比如定量,差异表达等一些分析。
- #使用Trinity准备好的脚本先用bowtie
- #align到拼接好的转录组,然后使用RSEM定量
- #运行这个脚本后会产生两个文件 'Sp_ds.isoforms.results' and 'Sp_ds.genes.results'
- #包含了Trinity 拼接的转录本(isoform) 和基因的raw counts数和标准化后的数值
- ${Trinity_home}/util/align_and_estimate_abundance.pl --seqType fq \
- --left RNASEQ_data/Sp_plat.left.fq.gz --right RNASEQ_data/Sp_plat.right.fq.gz \
- --transcripts trinity_out_dir/Trinity.fasta \
- --output_prefix Sp_plat --est_method RSEM --aln_method bowtie \
- --trinity_mode --prep_reference --output_dir Abundance_quantify/Sp_plat.RSEM
- #然后再对其他三个样本进行同样的操作
- #一个样本间的比较矩阵 ,结果产生一个后缀为 .counts.matrix的文件
- #显示了每个样本在每个转录本(isoform)上的map的数目(raw count)
- ${Trinity_home}/util/abundance_estimates_to_matrix.pl --est_method RSEM --out_prefix Trinity_trans \
- Abundance_quantify/Sp_ds.RSEM/Sp_ds.isoforms.results \
- Abundance_quantify/Sp_hs.RSEM/Sp_hs.isoforms.results \
- Abundance_quantify/Sp_log.RSEM/Sp_log.isoforms.results \
- Abundance_quantify/Sp_plat.RSEM/Sp_plat.isoforms.results
- #另外 Trinity_trans.TMM.EXPR.matrix 是消除了测序深度,基因长度,然后通过TMM方法标准化后的数值(假定其他大多数基因没有差异表达)
使用 EdgeR 分析差异表达基因
还是通过Trinity安装包里自带的脚本,不加参数运行会有基本参数的介绍
使用刚才获得的 Trinity_trans.count.matrix 文件
- > ${Trinity_home}/Analysis/DifferentialExpression/run_DE_analysis.pl \
- > --matrix Trinity_trans.counts.matrix \
- > --method edgeR \
- > --dispersion 0.1 \
- > --output edgeR
运行结果 '*.DE_results' 输出了运行edgeR 分离出来的差异表达的基因
logFC = log fold change
logCPM = log counts per million
- #提取FDR<=0.005)
- sed '1,1d' edgeR/Trinity_trans.counts.matrix.Sp_log_vs_Sp_plat.edgeR.DE_results | awk '{ if ($5 <= 0.05) print;}' | wc -l
- #画热图,需要进入刚才的/edgeR文件夹作为工作目录
- $TRINITY_HOME/Analysis/DifferentialExpression/analyze_diff_expr.pl \
- --matrix ../Trinity_trans.TMM.EXPR.matrix -P 1e-3 -C 2
- #-P 为p的阈值,-C 为fold change = 2^2 =4 倍
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