使用CNVnator分析动植物群体拷贝数变异CNV

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• 1.安装
• 2.测试
• 3.动植物群体检测CNV

知名的拷贝数变异分析工具几乎都是为人类变异检测开发，对于动植物重测序分析有些尴尬。不过好在植物群体研究不必那么精细，用同样的工具也可做分析。

地址：https://github.com/abyzovlab/CNVnator

1.安装

建议直接用conda。

conda create -n cnv cnvnator
conda activate cnv

查看帮助：

$ cnvnator
Not enough parameters.

CNVnator v0.4.1

Usage:
cnvnator -root out.root  [-genome name] [-chrom 1 2 ...] -tree  file1.bam ... [-lite]
cnvnator -root out.root  [-genome name] [-chrom 1 2 ...] -merge file1.root ...
cnvnator -root file.root  [-genome name] [-chrom 1 2 ...] -vcf [file.vcf.gz | file.vcf] [-rmchr] [-addchr]
cnvnator -root file.root  [-genome name] [-chrom 1 2 ...] -idvar [file.vcf.gz | file.vcf] [-rmchr] [-addchr]
cnvnator -root file.root  [-genome name] [-chrom 1 2 ...] -mask strict.mask.file.fa.gz [-rmchr] [-addchr]
cnvnator -root file.root [-genome name] [-chrom 1 2 ...] [-d dir | -fasta file.fa.gz] -his bin_size
cnvnator -root file.root [-genome name] [-chrom 1 2 ...] -baf bin_size [-hap] [-useid] [-nomask]
cnvnator -root file.root [-chrom 1 2 ...] -stat      bin_size
cnvnator -root file.root                  -eval      bin_size
cnvnator -root file.root [-chrom 1 2 ...] -partition bin_size [-ngc]
cnvnator -root file.root [-chrom 1 2 ...] -call      bin_size [-ngc]
cnvnator -root file.root -genotype bin_size [-ngc]
cnvnator -root file.root -view     bin_size [-ngc]
cnvnator -pe   file1.bam ... -qual val(20) -over val(0.8) [-f file]
cnvnator-root file.root [-chrom 1 2 ...] -cptrees newfile.root
cnvnator-root file.root -ls

Valid genomes (-genome option) are: NCBI36, hg18, GRCh37, hg19, mm9, hg38, GRCh38

2.测试

首先准备好数据，再利用一个小数据集，比如这里用一条染色体来测试一下流程。

准备基因组数据。需要将基因组按染色体/scaffold拆分成单条序列，放在一个目录下。

mkdir genome;cd genome
faSplit byname genome.fa genome
# faSplit可用conda安装，或者自己写脚本拆分

测试脚本，先用一条染色体试试：

#从bam文件中提取比对上的reads信息
cnvnator -root file.root -tree sample-1.rmdup.bam -chrom 1
#生成read depth分布图
cnvnator -root file.root -his 1000 -d genome/  -chrom 1
#计算统计结果
cnvnator -root file.root -stat 1000 -chrom 1
#RD信号分割
cnvnator -root file.root -partition 1000 -chrom 1
#拷贝数变异检测
cnvnator -root file.root -call 1000 -chrom 1 > cnv.call.txt
#转化为vcf，如果是conda安装，没有这个脚本，需要从GitHub上下载
/biosoft/CNVnator/cnvnator2VCF.pl cnv.call.txt genome >test.vcf

拷贝数cnv.all.txt结果：、

表头CNV_type coordinates CNV_size normalized_RD e-val1 e-val2 e-val3 e-val4 q0

• CNV_type有deletion和duplication两种类型；
• CNV_size 位于染色体区域；
• normalized_RD 矫正后的read depth；
• e-val1 t检验后的evalue值，通常该值越小，代表分析的结果越准确；
• q0 比对的质量值为0的reads占比，通常该值越大，代表分析的结果越不准确。

vcf结果：

没有自动加上样品名，需要自己修改。加上--prefix参数也只是改变CNV ID。

更多结果解读，请查看官方文档或网上其他教程。

3.动植物群体检测CNV

正式分析。

ls -l /project/gvcf/*.rmdup.bam |awk -F' ' '{print $8}' >sample.info
cat sample.info |while read id;do
    sample=`basename $id |sed 's/.rmdup.bam//'`
    echo $sample
    cnvnator -root file.root -tree $id
    cnvnator -root file.root -his 1000 -d genome/
    cnvnator -root file.root -stat 1000
    cnvnator -root file.root -partition 1000
    cnvnator -root file.root -call 1000  > cnv.call.txt
    /biosoft/CNVnator/cnvnator2VCF.pl cnv.call.txt genome >${sample}.cnv.vcf
    sed  -i "22s/cnv/${sample}/" ${sample}.cnv.vcf
    bgzip ${sample}.cnv.vcf
    tabix -p vcf ${sample}.cnv.vcf.gz
done

得到各个样本的拷贝数vcf文件，将它们合并成一个。

vcf-merge sample-1.cnv.vcf.gz sample-2.cnv.vcf.gz  ...>merge.vcf

或对不同类型群体进行合并。

https://blog.csdn.net/yangl7/article/details/114656482

https://www.jianshu.com/p/98542359df20

https://blog.csdn.net/weixin_43569478/article/details/108079613